ВОЗРАСТАНИЕ АКТИВНОСТИ β-ГЛЮКОЗИДАЗЫ КУЛЬТУРЫ PL.OSTREATUS (JACQ.:FR.) KUMM. В ОТВЕТ НА СТРЕССОВОЕ ВОЗДЕЙСТВИЕ
Авагян И.А., Минасбекян Л.А., Нанагулян С.Г.
ЕГУ, Ереван (Армения).
E-mail: inavag@rocketmail.com
В дереворазрушающих грибах содержится фермент β-глюкозид глюкогидролаза, обычно называемый β-глюкозидазой, катализирующий гидролиз алкил – и арил-β-глюкозидов, таких как диглюкозиды и олигосахариды. Этот фермент широко используется в различных биотехнологических процессах: для производства горючего этанола из целлюлозных сельскохозяйственных остатков, для получения различных ароматических веществ в пищевой промышленности. β-глюкозидаза является ключевым ферментом в ферментативном высвобождении ароматических соединений из глюкозидных предшественников, представленных в фруктах и ферментативных продуктах. β-глюкозидазы могут также улучшать органолептическиe свойства цитрусовых фруктовых соков, в которых горечь обусловлена содержанием глюкозиднoго соединения: наринджином (4′, 5, 7-тригидроксилфлавон-7-рамноглюкозид), для гидролизакоторого необходима последовательная обработка α-рамнозидазой и β-глюкозидазой.
ИССЛЕДОВАНИЕ ДОЗОВОЙ ЗАВИСИМОСТИ И АДАПТИВНОГО ОТВЕТА ПРИ ДЕЙСТВИИ УСКОРЕННЫХ ИОНОВ УГЛЕРОДА C ЭНЕРГИЕЙ 200 МЭВ/НУКЛОН НА МЫШАХ
Шемяков А.Е., Заичкина С.И., Розанова О.М. и др.
УРАН Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино (Россия), ФТЦ ФИАН им. Лебедева, Протвино (Россия),
Словацкий центр стандартов, метрологии и тестирования, Братислава (Словакия).
МОЛЕКУЛЯРНЫЕ МЕХАНИЗМЫ ФЕРМЕНТАТИВНОГО ГИДРОЛИЗА АТФ В АКТИВНОМ ЦЕНТРЕ БЕЛКА RECA ИЗ E. COLI
Швецов А.В., Петухов М.Г.
Петербургский Институт ядерной физики РАН, Гатчина (Россия). E-mail: alexxyum@gmail.com
Работа посвящена теоретическому исследованию механизма АТФазной активности белка RecA который является одним из центральных белков участвующих в реакции гомологической рекомбинации у прокариот. Аналоги этого белка существуют во всех организмах начиная от архебактерий (RadA) заканчивая эукариотическими организмами (Rad51).
ИССЛЕДОВАНИЕ ОБЬЕМ-ЗАВИСИМОГО АНИОННОГО КАНАЛА В МЕМБРАНЕ КЛЕТОК МЕЛАНОМЫ
Циферова Н.А., Кузнецова Н.Н., Мерзляк П.Г. и др.
Институт физиологии и биофизики АН РУз., Ташкент (Узбекистан), Национальный университет Узбекистана им. Мирзо Улугбека, Ташкент (Узбекистан), Институт биоорганической химии АН РУз., Ташкент (Узбекистан).
ДЕЙСТВИЕ РАСТИТЕЛЬНОГО АЛКАЛОИДА ДЕЛЬБРУЗИНА НА СОКРАТИТЕЛЬНУЮ АКТИВНОСТЬ ПАПИЛЛЯРНОЙ МЫШЦЫ КРЫСЫ
Хушматов Ш.С., Усманов П.Б., Салимов Б.Т.
Институт физиологии и биофизики АН РУз, Ташкент (Узбекистан), Институт химии растительных веществ АН РУз, Ташкент (Узбекистан).
E-mail: shunqorhsh@mail.ru
Целью данной работы явилось изучение влияния дитерпеноидного алкалоида дельбрузина, выделенного из растений рода DelphiniumL. на сократительную активность папиллярной мышцы крысы.
ИНОТРОПНОЕ ДЕЙСТВИЕ ДИТЕРПЕНОИДНОГО АЛКАЛОИДА ДЕЛЬФАТИНА НА СОКРАТИТЕЛЬНУЮ ФУНКЦИЮ КАРДИОМИОЦИТОВ КРЫСЫ
Хушматов Ш.С., Усманов П.Б., Салимов Б.Т.
Институт физиологии и биофизики АН РУз, Ташкент (Узбекистан), Институт химии растительных веществ АН РУз, Ташкент (Узбекистан).
E-mail: shunqorhsh@mail.ru
МОРФОЛОГИЧЕСКАЯ ОЦЕНКА ЗАРОДЫШЕЙ МЫШИ ПОСЛЕ МИКРОИНЪЕКЦИИ ДЛЯ ПРЕДСКАЗАНИЯ РАЗВИТИЯ IN VITRO
Храмцова Е.А., Капралова И.В.
Институт биофизики клетки РАН, Пущино (Россия). E-mail: hramelan@gmail.com
В последние годы широко используются вспомогательные репродуктивные технологии, позволяющие решить проблемы зачатия и невынашиваемости беременности. Предимплантационные зародыши, развивающиеся in vitro до стадии бластоцисты, чувствительны к осмотичности культуральной среды, не говоря уже о процедуре микроинъекции, используемой для генетической трансформации зародыша. В этом случае в полость зародыша клетки вводят в буферная среде, что приводит к осмотическим повреждениям зародыша. Это приводит к снижению качества зародышей и неспособности имплантироваться после переноса их в матку. Поэтому важно разработать систему морфологической оценки предимплантационных зародышей после микроинъекции для определения качества, способности развиваться и имплантироваться. Для этого использовали следующий подход: бластоцисты мыши делили на две группы по стадиям развития – среднюю и позднюю. В полость бластоцисты вводили разные объемы (30, 40, 50 нл) среды Виттена с клетками Cos-1, трансфецированных геном GFP или без них. Оценивали изменения объема зародышей после микроинъекции и способность восстанавливать прежнюю морфологию. Зародыши культивировали в стандартных условиях в течение 72 ч, при этом через каждые 24 ч определяли морфологию развивающихся бластоцист. Для каждого зародыша отдельно оценивали способность восстанавливать прежнюю морфологию и объем бластоцеля, выход из z. pellucidaчерез 24 ч, адгезию на поверхности эмбриональной чашки – через 48 ч и формирование первичных колоний эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) через 72 ч после микроинъекции. Формирование колоний ЭСК в культуре идентично процессу имплантации в системе in vivo.
ТОКСЧИЧЕСКИЕ ЭФФЕКТЫ ЖИРНЫХ КИСЛОТ. РОЛЬ ФОСФОЛИПАЗ
Федотова Е.И., Бережнов А.В., Зинченко В.П., Дынник В.В.
Институт биофизики РАН, Пущино (Россия),
Пущинский государственный университет, Пущино (Россия),
Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино (Россия).