Это можно сделать двумя способами:
1) Через специальную Форму отправки научных статей отправить статьи на проверку;
2) Зарегистрироваться на сайте и войти под своей учетной записью, далее - отправить статьи на проверку модератором.
Хушматов Ш.С., Усманов П.Б., Салимов Б.Т.
Институт физиологии и биофизики АН РУз, Ташкент (Узбекистан), Институт химии растительных веществ АН РУз, Ташкент (Узбекистан).
E-mail: shunqorhsh@mail.ru
Храмцова Е.А., Капралова И.В.
Институт биофизики клетки РАН, Пущино (Россия). E-mail: hramelan@gmail.com
В последние годы широко используются вспомогательные репродуктивные технологии, позволяющие решить проблемы зачатия и невынашиваемости беременности. Предимплантационные зародыши, развивающиеся in vitro до стадии бластоцисты, чувствительны к осмотичности культуральной среды, не говоря уже о процедуре микроинъекции, используемой для генетической трансформации зародыша. В этом случае в полость зародыша клетки вводят в буферная среде, что приводит к осмотическим повреждениям зародыша. Это приводит к снижению качества зародышей и неспособности имплантироваться после переноса их в матку. Поэтому важно разработать систему морфологической оценки предимплантационных зародышей после микроинъекции для определения качества, способности развиваться и имплантироваться. Для этого использовали следующий подход: бластоцисты мыши делили на две группы по стадиям развития – среднюю и позднюю. В полость бластоцисты вводили разные объемы (30, 40, 50 нл) среды Виттена с клетками Cos-1, трансфецированных геном GFP или без них. Оценивали изменения объема зародышей после микроинъекции и способность восстанавливать прежнюю морфологию. Зародыши культивировали в стандартных условиях в течение 72 ч, при этом через каждые 24 ч определяли морфологию развивающихся бластоцист. Для каждого зародыша отдельно оценивали способность восстанавливать прежнюю морфологию и объем бластоцеля, выход из z. pellucidaчерез 24 ч, адгезию на поверхности эмбриональной чашки – через 48 ч и формирование первичных колоний эмбриональных стволовых клеток (ЭСК) через 72 ч после микроинъекции. Формирование колоний ЭСК в культуре идентично процессу имплантации в системе in vivo.
Федотова Е.И., Бережнов А.В., Зинченко В.П., Дынник В.В.
Институт биофизики РАН, Пущино (Россия),
Пущинский государственный университет, Пущино (Россия),
Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино (Россия).
Трудовишников А.С., Белослудцев К.Н.
Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино (Россия). E-mail: idillviell@rambler.ru
Бислой фосфолипидов составляет основу всех клеточных мембран, определяя их барьерные и механические свойства. В процессе жизнедеятельности непрерывность бислоя может нарушаться с образованием структурных дефектов, таких как гидрофильные липидные поры. Это, в свою очередь, приводит к изменению всех функций мембраны, включая ее проницаемость и стабильность.
Торгомян Э.Р., Киракосян Г.Р., Трчунян А.А.
Ереванский государственный университет, Ереван (Армения).
E-mail: h.torgomyan@ysu.am
Бактерии, несмотря на то, что являются довольно выносливыми существами, подвергаются влиянию разных факторов окружающей среды, например радиоактивного излучения (РИ). Реакция клеток на такое стрессовое воздействие проявляется существенными изменениями характеристик роста клеток, а также активности их транспортных и ферментативных систем. Исходя из этого бактерии могут служить моделью для сравнительного изучения влияния РИ на клетки тканей человека и обнаружения радиопротекторных и радиосенсибилизационных свойств разных, в том числе, новых синтезированных производных аминокислот.
Стенковая Т.А., Гаташ С.В., Николов О.Т., Горобченко О.А.
Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина, Харьков (Украина).
E-mail: iri_st@mail.ru
Сахарный диабет (СД) 2 типа является одним из наиболее распространенных заболеваний в современном обществе. Снижение качества жизни больных сахарным диабетом происходит, прежде всего, за счет сосудистых осложнений, обусловленных активацией процессов перекисного окисления липидов и разрушением мембраны клетки. Поэтому изучение свойств эритроцитов больных СД 2 типа представляют чрезвычайно важную задачу, направленную на совершенствование диагностики и лечения данного заболевания.
Сорокина С.С., Дюкина А.Р., Вахрушева О.А.
Институт теоретической и экспериментальной биофизики РАН, Пущино (Россия). E-mail: sv0723@yandex.ru
Целью настоящей работы было изучение сочетанного действия иммуномодулятора дибазола и дозы 16 сГр плотноионизирующего излучения при мощности 0.43 сГр/сут на мышах invivo: адаптивного ответа (АО) с помощью микроядерного теста и скорости роста опухоли в F0 поколении, а также генетической нестабильности (ГН) в F1 и F2 поколениях.
Песина Д.А., Хорунжая О.В., Кашпур В.А.
Харьковский национальный университет им. В.Н. Каразина, Харьков (Украина),
Институт радиофизики и электроники им. А.Я. Усикова НАН Украины, Харьков (Украина).
E-mail: dashapesina@gmail. com